Manejo del trébol amarillo: control de las plantas de trébol amarillo


Por: Teo Spengler

El trébol amarillo (se puede escribir como dos palabras), también llamado meliloto acanalado, no es un verdadero trébol ni es especialmente dulce. Es una planta leguminosa con el nombre científico Mililotus officianalisy, a veces, se utiliza como alimento para el ganado. Siga leyendo para obtener más información sobre por qué el trébol amarillo se considera una mala hierba en algunas áreas y consejos sobre el manejo del trébol amarillo.

¿Qué es el trébol amarillo?

Entonces, ¿qué es el trébol dulce amarillo? ¿Un cultivo forrajero? ¿O el trébol amarillo es una mala hierba? Todo depende de tu perspectiva. La planta bienal es una leguminosa que crece hasta 6 pies (2 m.) De altura y está coronada por flores de color amarillo brillante. Tiene tallos gruesos y hojas dentadas.

El trébol amarillo no es una planta nativa de este país, pero fue importado de Europa y Asia. Se utiliza como alimento para el ganado y como heno cuando es joven. Después de que la planta florece, se vuelve tallosa, lo que la hace problemática como el heno. Un problema aún más grave con el trébol dulce es el hecho de que contiene la toxina cumarina. Esto le da a la legumbre un sabor amargo.

El trébol amarillo se vuelve más tóxico cuando se calienta o se echa a perder. Si se consume en esta etapa, reduce la capacidad de coagulación de la sangre de un animal y puede ser letal. Por eso es importante controlar el trébol amarillo.

¿Por qué el trébol amarillo es una mala hierba?

En muchas áreas, el trébol amarillo se considera una mala hierba. Eso se debe a que se propaga rápidamente y, a menudo, crece donde no se desea, como campos abiertos, carreteras y otros sitios perturbados. Las semillas pueden permanecer viables durante 30 años o más.

Sin embargo, existen muchos usos beneficiosos del trébol amarillo dulce. Esta planta proporciona alimento para la vida silvestre y también néctar para las abejas. También es una planta fijadora de nitrógeno que se utiliza como cultivo de cobertura y, como se mencionó, funciona como alimento para el ganado.

Dicho esto, los tóxicos de bajo nivel contenidos en la planta pueden ser peligrosos para los animales, tanto el ganado como la vida silvestre. Alimentarse de trébol amarillo mohoso puede causar un trastorno hemorrágico fatal.

Gestión de trébol dulce amarillo

Las plantas de trébol amarillo son tolerantes a la sequía y excepcionalmente tolerantes al frío. Se propagan por semillas y producen muchas de ellas. Si está interesado en controlar el trébol amarillo, es mejor actuar antes de que florezcan las flores amarillas.

Retire las plantas temprano, antes de que se formen las semillas. Esta es la clave para el manejo del trébol amarillo. ¿Cómo eliminarlos? La extracción manual funciona bien, si no tiene acres con los que lidiar. Cortar el césped también funciona para áreas más grandes, y las quemaduras controladas pueden ayudar a controlar el trébol amarillo.

¿Qué hay de controlar el trébol dulce amarillo cuando está maduro? En esta etapa, tendrás que quitar las semillas. Eso es más difícil porque las semillas son resistentes y duraderas. Resisten la fumigación del suelo y la solarización.

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Leguminosas forrajeras

En esta guía de leguminosas forrajeras de Minnesota, encontrará características, usos y variedades de varias especies comunes, incluidos varios tréboles, trébol de patas de pájaro, vicia de corona, cicer milkvetch y alfalfa.

Identificación de leguminosas perennes

Para identificar especies de leguminosas individuales, puede utilizar los rasgos de las hojas.

Las hojas de las leguminosas suelen ser compuestas, lo que significa que tienen más de un prospecto por hoja y, a menudo, tienen estípulas grandes. Las hojas nacen sobre pecíolos, que se adhieren a los tallos (Figura 1).

Folletos por hoja

Aunque las hojas de trébol y alfalfa suelen tener tres folíolos por hoja, a veces tienen cuatro o cinco.

La frecuencia de cuatro o más folíolos por hoja está influenciada tanto por la composición genética de la planta como por el entorno de crecimiento. Debido a que los tréboles de cuatro hojas ocurren con relativa poca frecuencia, se dice en el folclore para impartir buena suerte. Algunas legumbres tienen 10 o más folíolos.

Arreglos de folletos

Cuatro arreglos u organizaciones de folletos ocurren en las hojas de especies de leguminosas que se cultivan comúnmente en la región centro-norte de los Estados Unidos:

Trifoliolado palmeado: Trébol rojo, blanco, parecido y kura. Estas legumbres se llaman verdaderos tréboles.

Pinnado trifoliolado: Alfalfa y trébol dulce.

Pinnadas impares: trébol de patas de pájaro, crownvetch y cicer milkvetch.

Incluso pinnado con zarcillos: Vicia peluda.

Las flores de leguminosas suelen ser vistosas y coloridas. Estas características mejoran la capacidad de las plantas para atraer a sus insectos polinizadores, incluidas muchas especies de abejas nativas, así como la abeja europea.

Partes de flores

Las partes de las flores de las leguminosas son el estándar (también llamado estandarte), las alas y la quilla (Figura 2). La quilla rodea las partes sexuales masculinas y femeninas.

Inflorescencias

Las flores de las leguminosas están dispuestas en grupos llamados inflorescencias (Figura 3). Las inflorescencias de leguminosas más comunes son:

Cabeza: En trébol rojo, blanco, parecido y kura.

Racimo: Alfalfa, trébol dulce y cicer milkvetch.

Umbela: trébol de patas de pájaro y corona.

Por lo general, una cabeza contiene muchas flores, mientras que los racimos y las umbelas contienen pocas.

Después de la polinización, las semillas de leguminosas se desarrollan en vainas. Las vainas pueden contener varias semillas, como en el trébol de patas de pájaro y la alfalfa, o solo una semilla, como en el trébol kura y el trébol dulce. Cuando las vainas se secan, pueden romperse y la semilla se dispersa.

Las leguminosas forrajeras suelen ser plantas de raíz principal con raíces secundarias finas producidas a partir de la raíz principal. Estas raíces secundarias generalmente son noduladas por bacterias fijadoras de nitrógeno. Las figuras 4 y 5 ilustran esto para el trébol de patas de pájaro y el trébol rojo.

Una raíz principal muy grande da a las leguminosas como la alfalfa, el trébol kura y el trébol dulce una mayor tolerancia a la sequía que otras leguminosas forrajeras. Por el contrario, los sistemas radiculares más fibrosos y poco profundos de otras leguminosas, como el trébol blanco y similar, reducen su resistencia a la sequía.

Los estolones son tallos horizontales sobre el suelo (Figura 6). Los rizomas son tallos horizontales subterráneos.

Ambos permiten la reproducción vegetativa sin semillas, ya que pueden surgir nuevos tallos y raíces de los nudos de los estolones y rizomas. Esto mejora la persistencia de la planta mientras crea más sitios de raíces para el crecimiento de nódulos.

Los estolones se encuentran en el trébol blanco, mientras que los rizomas se encuentran en el trébol kura, cicer milkvetch y crownvetch. Las legumbres con rizomas se encuentran entre las especies más persistentes.

Leguminosas forrajeras

Trébol de KuraTrifolium ambiguum Bieb.) Es una planta perenne de crecimiento relativamente bajo que se extiende y tiene un excelente potencial para el pastoreo. También se le llama trébol caucásico, de Pellett o de miel.

Historia

El trébol de Kura es originario de la región del Cáucaso de Europa y recibe su nombre del río Kura en el país de Georgia. Se introdujo en los Estados Unidos aproximadamente en 1910, pero siguió siendo poco conocido hasta la década de 1940.

Fue entonces cuando Frank Pellett, impresionado con su potencial para la producción de miel y sus características agronómicas deseables, escribió sobre ello en el American Bee Journal. Sin embargo, el interés no aumentó hasta hace poco debido al suministro inadecuado de semillas de variedades mejoradas y la falta de disponibilidad de rizobios fijadores de nitrógeno adecuados.

Variedades

El Servicio de Conservación de Suelos y la Universidad de Kentucky lanzaron la primera variedad estadounidense, Rhizo, en 1990. Muy persistente, ha sobrevivido más de 15 años de pastoreo continuo en St. Paul y 12 años mezclada con diferentes pastos en Arlington, Wisconsin.

Las variedades más nuevas incluyen Everlast, Endura y Cossack. Endura ha sobrevivido 22 años en mezcla con festuca alta y bromegrass suave en pastos de pastoreo rotacional cerca de Lancaster, Wis.

Caracteristicas

El trébol de Kura tiene una raíz principal ramificada profunda y rizomas (tallos horizontales subterráneos), que le permiten extenderse vigorosamente (Figura 6). Sus coronas pueden estar a dos pulgadas por debajo de la superficie del suelo. Las plantas individuales pueden aumentar a través del crecimiento de rizomas en aproximadamente un pie por año sin competencia, y menos con competencia de pasto.

Para el otoño del año de siembra, el trébol kura puede tener un crecimiento significativo de raíces y rizomas. Un rodal de cinco años puede producir más de tres toneladas por acre de biomasa subterránea (30 por ciento de raíces, 45 por ciento de rizomas, 25 por ciento de coronas).

Los folíolos suelen ser trifoliolados, oblongos y con marcas de agua, con una variación considerable en las características de las hojas en una población. Se han observado hojas con cuatro o cinco folíolos. Los folíolos y los tallos no son vellosos, pero los márgenes de los folíolos están muy aserrados en los bordes.

El tamaño de las hojas varía considerablemente según las condiciones de crecimiento durante la temporada, y varía de 1 a 3 pulgadas de largo y de 1/4 a 2 pulgadas de ancho.

Adaptacion

El trébol de Kura tiene una excelente tolerancia a muchos factores climáticos y de gestión estresantes. No tiene grandes problemas de enfermedades y es productivo en diversos entornos. El trébol de Kura tiene una mayor persistencia bajo pastoreo rotativo y continuo, y corte frecuente, que cualquier leguminosa comúnmente cultivada.

Después de dos a cuatro cortes por año durante tres años en el sur de Minnesota, el trébol kura tenía poblaciones de plantas superiores al 90 por ciento (la alfalfa y otras leguminosas eran del 50 por ciento o menos). Su persistencia se debe en parte al extenso sistema subterráneo de raíces, coronas y rizomas que es un sitio para un almacenamiento considerable de carbohidratos.

Para las legumbres como la alfalfa y el trébol rojo, la recolección frecuente agota la concentración de carbohidratos de la raíz, pero la concentración de carbohidratos en las estructuras subterráneas del trébol kura solo se ve mínimamente afectada.

Tolerancia al clima

El trébol de Kura es muy resistente al invierno. Permanece inactivo a principios del otoño en respuesta a la corta duración del día y las bajas temperaturas. Es muy resistente a las lesiones por congelación y descongelación, persistió durante más de 20 años y sobrevivió a condiciones invernales extremas en Minnesota y Wisconsin, mientras que todas las demás legumbres murieron.

El trébol de Kura tiene una excelente tolerancia a la sequía, aunque permanece inactivo durante períodos secos prolongados y rinde menos que la alfalfa (pero similar a otros tréboles y trébol de patas de pájaro). Aunque el crecimiento de la hierba se reduce durante la sequía, el trébol kura reanuda su crecimiento después de la reposición de la humedad del suelo.

A menudo, también puede soportar suelos mal drenados, sobrevivir a las inundaciones y sobrevivir en sitios con un nivel freático alto. En Australia, las plantas de trébol kura tuvieron una tasa de supervivencia del 80 por ciento cuando se inundaron hasta 40 días.

El trébol de Kura es más adecuado como cultivo de pastoreo debido a su hábito de crecimiento postrado y su forraje muy frondoso y de alta humedad. Sin embargo, su primer crecimiento en la primavera que contiene un tallo alargado se puede cosechar para heno o heno. El posterior rebrote serán hojas sostenidas por pecíolos que se originan en coronas y rizomas.

En consecuencia, durante la mayor parte de la temporada, el trébol de kura es muy frondoso y tiene un alto valor alimenticio. La calidad de su forraje a menudo excede la calidad de otras leguminosas cultivadas comúnmente. Los mayores rendimientos se producen en primavera; los rendimientos son menores en verano y otoño. Los rendimientos de forraje varían de dos a seis toneladas por acre, siendo lo más probable un promedio de alrededor de cuatro toneladas por acre.

Mezclas de pastoreo

Las mezclas de pasto y trébol kura pueden producir un forraje de calidad adecuado para vacas lecheras lactantes o para soportar grandes ganancias de peso de corderos o novillos. El trébol de Kura tolera el pastoreo rotacional a intervalos de 14 a 28 días o, aunque no se recomienda, el pastoreo continuo.

En condiciones de pastoreo o recorte estresante, las plantas se adaptan acortando los pecíolos de las hojas, lo que hace que las hojas estén más cerca de la superficie del suelo. A diferencia del trébol rojo, las ovejas reproductoras pueden pastar con seguridad el trébol kura porque no contiene fitoestrógenos.

Debido a su bajo contenido de fibra, alto contenido de proteínas y potencial de hinchazón, plante el trébol kura en mezcla con pastos perennes. Las mezclas deben ser de 30 a 60 por ciento de hierba. El trébol de Kura se puede establecer con éxito con las gramíneas perennes más utilizadas.

Base su elección de especies de césped en la productividad y persistencia del césped en un sitio, y en la preferencia de manejo por cualquier césped en particular. Los ensayos de pastoreo a largo plazo en Minnesota y Wisconsin muestran que la selección del pasto influye en el rendimiento y la composición del pasto de las mezclas (Figura 8).

Las mezclas de trébol kura bien nodulado con pasto han producido tanto como pasto fertilizado con hasta 300 libras de nitrógeno por acre. El establecimiento del trébol kura con el trébol de patas de pájaro no competitivo mejora el rendimiento del año de plántula, el rendimiento del primer año y el establecimiento del trébol kura. Con el tiempo, la población de trébol kura aumenta mientras que la población de trébol de patas de pájaro disminuye.

Establecimiento

Establecer el trébol kura es más desafiante que la mayoría de las otras leguminosas forrajeras. Tiene menos vigor de plántula que el trébol blanco y el trébol de patas de pájaro. Las plántulas son frágiles y se desarrollan lentamente.

Sin embargo, los recursos gastados para establecer kura clover son una inversión que proporciona años de rendimiento. La producción de forraje y la densidad del rodal en el año de siembra serán normalmente bajas pero, como se ha dicho, "el trébol de Kura duerme en el primer año, se arrastra en el segundo año y salta en el tercer año".

Control de marihuana

Debido a la falta de vigor de las plántulas, es esencial minimizar la competencia con las malezas o cultivos acompañantes en el establecimiento. Para lograr los mayores rendimientos de establecimiento de trébol kura, use un herbicida para el control de malezas en el año de siembra. Si planta cultivos complementarios para reducir la erosión del suelo, cosechelos como forraje en las etapas vegetativas para reducir la competencia.

El trébol de Kura también se ha sembrado con éxito en pastizales con estrategias de labranza cero, siempre que los pastos existentes se supriman con herbicidas como el glifosato. Los enfoques de labranza cero reducen la erosión del suelo y pueden reducir la presión anual de las malezas.

Trasplante

El trébol de Kura se ha establecido con éxito trasplantando porciones de los rizomas subterráneos. Los rizomas trasplantados con uno o más nodos pueden formar nuevas raíces y coronas y extenderse dentro de un campo si la humedad y la fertilidad del suelo son adecuadas.

Se han establecido grandes campos utilizando una excavadora de patatas para extraer los rizomas y las coronas, seguido de un esparcimiento del material vegetal en un campo recién labrado utilizando un esparcidor de estiércol e incorporándolo por disco.

Fertilizantes

La fijación biológica de nitrógeno se desarrolla más lentamente para el trébol kura que para otras leguminosas.

Mejore los rendimientos del año de establecimiento y siembra aplicando pequeñas cantidades de fertilizante nitrogenado en el año de siembra en suelos gruesos bajos en nitrógeno (20 libras de nitrógeno por acre en el establecimiento y nuevamente en la primera cosecha, aproximadamente 60 días después). Sin embargo, la fertilización con nitrógeno a veces también puede aumentar la competencia de las malezas si no se controlan las malezas.

Estabilización de suelos

Debido a su hábito de crecimiento postrado y extendido, el trébol kura tiene potencial para su uso en proyectos de estabilización de suelos. Su densa alfombra de rizomas retiene el suelo y evita la erosión.

Con la tecnología adecuada de supresión y siembra, el trébol de kura también se puede manejar como mantillo vivo en el maíz con poca o ninguna reducción en el rendimiento de grano o ensilado.

El trébol de Kura proporciona casi todo el nitrógeno necesario, proporciona una cobertura del suelo permanente para reducir la escorrentía del suelo y los nutrientes y recupera la producción total de pastos la temporada siguiente. Sin embargo, cuando la soja se sembró sin labranza en un mantillo vivo de trébol kura suprimido, los rendimientos de la soja se redujeron en comparación con la soja sembrada en trébol kura muerto por labranza.

Producción de semillas

El trébol de Kura florece en respuesta a los largos días de primavera.

El rebrote inicial consiste en tallos erguidos que sostienen una o dos flores grandes, fragantes, de color rosa-blanco. Si el rebrote inicial no se corta y se deja madurar, la semilla se produce en julio o agosto.

Producir semillas de trébol de kura es más difícil que para muchas otras especies de leguminosas forrajeras. Los productores deben considerar el historial de cultivos anteriores de un campo. La pureza de la semilla es un problema porque las legumbres que anteriormente estaban en el sitio, como el trébol rojo, producen una semilla de tamaño similar a la kura. Esto hace que sea difícil separarlos.

Plantar y crecer

Los campos de producción de semillas se siembran en hileras o al voleo a aproximadamente una cuarta parte de la tasa de siembra de forrajes. Es deseable un semillero firme que permita una profundidad de siembra uniforme de 1/4 a 1/2 pulgada. El trébol de Kura generalmente se establece usando herbicidas, sin un cultivo complementario, después del lavado inicial de malezas de primavera y antes de finales de julio.

Los requisitos de fertilidad del suelo para la producción de semillas son los mismos que para la producción de forrajes, se recomienda una prueba del suelo antes del establecimiento y cada dos años durante la producción. Después del establecimiento, puede ser necesario rociar o rociar localmente para eliminar las malezas perennes problemáticas, como los cardos.

Los insectos polinizadores, especialmente las abejas, son importantes para la producción de semillas. Se recomienda una colmena de abejas por acre para la producción de semillas, pero es posible que necesite más abejas si hay competencia por polinizadores de otros cultivos.

Cosecha

Una cosecha exitosa requiere una acción rápida, oportuna y cuidadosa. Hilera los campos cuando la mayoría de los tallos se hayan vuelto marrones y combínelos cuando el cultivo esté seco o combínelos directamente en el campo después de usar un desecante químico.

Para maximizar el rendimiento de semillas, se requiere una cuidadosa calibración de la cosechadora porque la semilla es difícil de trillar. Los campos de semillas de trébol de Kura pueden quedar atados al césped después de varios años debido a la gran masa de raíces y la producción de rizomas. Puede seguir una disminución en la producción de semillas, lo que requeriría retirar el campo de producción.

Un uso adicional asociado con la producción de semillas es la producción de miel. Las flores de trébol de Kura están muy perfumadas con una corola poco profunda, lo que mantiene su néctar de alto contenido de azúcar fácilmente disponible para las abejas. Si se permite que el trébol de kura florezca, puede administrar los pastos de trébol de kura o los campos de producción de semillas para producir miel como una fuente adicional de ingresos.


El trébol dulce amarillo bienal tarda dos años en producir una planta con flores. El primer año, el trébol dulce amarillo crece en forma de roseta. Después de un período de vernalización, produce un brote y flores. Puede producir hasta 2,5 toneladas de materia seca y puede crecer hasta 24 pulgadas. Si las condiciones son favorables, puede alcanzar hasta 8 pies en el segundo año. Bajo tierra, su raíz principal puede extenderse hacia abajo 5 pies al final de la primavera. El trébol blanco no produce tanta biomasa como el amarillo. Es una planta más alta y con más tallos que es mejor para la construcción del suelo.

El trébol dulce blanco se cultiva más comúnmente como un cultivo beneficioso porque a las abejas y otros polinizadores les gustan mucho las flores. Madura unas dos semanas más tarde que Yellow Sweetclover. También se cultiva como abono verde productor de nitrógeno. El trébol dulce tiene un valor alimenticio pobre y no se recomienda para alimento o forraje para ganado.

La Extensión de la Universidad Estatal de Michigan afirma ...

El trébol dulce se ha utilizado históricamente para el pastoreo o como alimento de emergencia. Pero Kim Cassida, especialista en forrajes de Extensión de la Universidad Estatal de Michigan, no lo recomienda porque puede ser tóxico para el ganado. “El factor tóxico es el dicumarol, que se forma a partir de la cumarina solo cuando el trébol dulce se estropea con ciertos tipos de moho. La intoxicación es más probable por el heno que por el ensilaje / heno y se ha informado en bovinos, ovinos, porcinos y equinos. Ocasionalmente ha ocurrido envenenamiento mientras pastaba. El forraje de trébol dulce no tiene que estar visiblemente mohoso para ser tóxico. La mayoría de las variedades de heno, heno y ensilado de trébol dulce solo deben alimentarse con mucha precaución y cuando no haya otras opciones disponibles. Algunas variedades de trébol dulce amarillo ('Norgold') y blanco ('Cumino,' 'Denta,' 'Polara') se han criado para obtener un bajo contenido de cumarina y, por lo tanto, un uso de forraje más seguro, pero estas variedades no están tan ampliamente disponibles como las normalmente se utiliza como cultivos de cobertura ". La entrada sobre trébol dulce del Manual veterinario de Merck es una buena fuente de detalles sobre la intoxicación por trébol dulce.

Resistente al invierno, mejor para la siembra de otoño.


CARACTERÍSTICAS BOTÁNICAS Y ECOLÓGICAS

Descripción botánica: Esta descripción cubre características que pueden ser relevantes para la ecología del fuego y no está pensada para identificación. Las claves para la identificación están disponibles (por ejemplo, [82,98,101,191,235,267,268]).

Descripción aérea: El trébol dulce amarillo y blanco tienen hábitos de crecimiento y morfología muy similares [11,117]. En su estado vegetativo, el trébol dulce amarillo y blanco son difíciles de distinguir [98,110]. La distinción más obvia entre las dos especies es el color de la flor, que es amarillo para el trébol dulce amarillo y blanco para el trébol dulce blanco [101,107,201,268]. Sin embargo, cuando las flores están secas, ambas pueden tener un color crema [93].

El trébol dulce es bienal [126,127,158,191], aunque en raras ocasiones se observaron formas de crecimiento anual y perenne. En la Granja de Investigación Matanuska en el centro-sur de Alaska, las semillas de trébol dulce de latitudes medias y de los bordes de las carreteras de Alaska produjeron plantas que florecieron durante el primer año. Los experimentos con luz artificial revelaron que el crecimiento anual fue provocado por largos períodos de luz y la falta de oscuridad [124,125]. En London, Ontario, algunas plantas de trébol dulce cortadas "rigurosamente" durante la temporada de crecimiento florecieron en la tercera temporada de crecimiento. Todas las plantas murieron después de la floración (datos no publicados de Cavers citados en [251]). Los estudios de Smith [217] demostraron que el crecimiento anual y bienal del trébol blanco está controlado por un solo gen, que puede alterarse mediante una sola mutación.

En el primer año de crecimiento, el trébol dulce produce un solo tallo con muchas ramas. Cerca del final de la primera temporada de crecimiento, los nutrientes se asignan bajo tierra a la raíz principal y se forman los brotes de la corona de la raíz. En el segundo año de crecimiento, el número de tallos de trébol dulce aumenta, las plantas son mucho más grandes y se producen flores y semillas (revisión de [220]). A continuación, se proporcionan más detalles sobre la fenología y las características de las plantas de 1º y 2º año en las secciones Descripción subterránea y Desarrollo estacional.

El trébol dulce es generalmente una planta erecta y libremente ramificada de hasta 10 pies (3 m) de altura [82,235]. Los tallos son gruesos con hojas alternas de 3 pinnadas y flores axilares [93,158,282]. Los folíolos son pequeños, de 0,4 a 1 pulgada (1-2,5 cm), y las flores perfectas, parecidas a un guisante, se presentan en racimos de 30 a 70 flores que miden 1,5 a 4,7 pulgadas (4-12 cm) de largo [101,158,191,241]. Las leguminosas miden hasta 4 mm de largo, apenas dehiscentes y normalmente producen solo 1 semilla, pero pueden producir 2 [82,98,169,191].

Aunque el trébol dulce amarillo y blanco son más parecidos que diferentes, las siguientes diferencias morfológicas son comunes:

  • El trébol dulce blanco es generalmente más alto, tiene una forma más erecta y produce tallos y ramas más gruesos que el trébol dulce amarillo ([10], revisado por [45,220]) el trébol dulce blanco puede ser hasta 3 pies (1 m) más alto que el trébol dulce amarillo [241 ].
  • En el pico de floración, los racimos de trébol dulce blanco son mucho más largos (8-15 veces) que los del trébol amarillo [267].
  • Los folíolos producidos por el trébol dulce amarillo suelen ser dos veces más anchos que los producidos por el trébol dulce blanco [188,267].
  • Las legumbres de trébol amarillo están arrugadas y las legumbres de trébol blanco son venosas [117,188].

La forma y morfología de crecimiento del trébol dulce son variables, no solo porque se introdujeron muchos cultivares, formas y ecotipos diferentes en América del Norte, sino también porque las características de crecimiento pueden verse influenciadas por las condiciones ambientales. La altura de la planta aumenta con el aumento de la duración del día, y las bajas temperaturas pueden limitar la producción de flores (revisión por [251]). Para obtener descripciones de algunos cultivares de trébol dulce, consulte las siguientes referencias: [219,273,285].

Descripción del subsuelo: El trébol dulce produce una raíz primaria con raíces fibrosas secundarias y nódulos bacterianos [11,101,268]. Las raíces principales son semi leñosas y las raíces laterales pueden ser extensas (reseñas de [45,254]). Las raíces laterales pueden extenderse de 6 a 8 pulgadas (15 a 20 cm) desde la raíz primaria (revise por [251]). En campos experimentales en Columbus, Ohio, las raíces pivotantes de trébol dulce de primer año penetraron más de 4 pies (1,2 m) de profundidad. Las plantas de segundo año tenían raíces de hasta 5,5 pies (1,7 m) de profundidad en julio. Se produjeron nódulos bacterianos en raíces de hasta 1,2 m (4 pies) de profundidad. El aumento de la longitud de las raíces entre estas plantas de primer y segundo año puede no reflejar la edad de la planta, sino las diferencias del lugar. La mayoría de las plantas de trébol dulce alcanzaron la longitud máxima de sus raíces en el primer año. Los sistemas de raíces eran menos profundos en suelos secos que húmedos [289].

Bare [10] informa que las raíces de trébol amarillo son generalmente más cortas pero se extienden más lejos que las raíces de trébol blanco. El trébol dulce blanco de primer año extraído de un campo en Columbus, Ohio, a principios de mayo, produjo raíces pivotantes con un promedio de 9,3 pulgadas (23,6 cm) de largo y 0,3 pulgadas (0,8 cm) de diámetro [289]. En un sitio arenoso cerca de Central City, Nebraska, los investigadores describieron el sistema de raíces de una planta de trébol blanco de primer año que medía 3 pies (1 m) de altura con 15 tallos. Cerca de la corona de la raíz, la raíz principal mide 1,5 pulgadas (4 cm) de diámetro. El diámetro se redujo a aproximadamente 1 cm por aproximadamente 1,5 pies (0,5 m) de profundidad y permaneció ese tamaño hasta la profundidad máxima de la raíz principal de 5 pies (1,5 m). La mayoría de las raíces laterales también alcanzaron 5 pies (1,5 m) de profundidad, pero rara vez se extendieron más de 2 pies (0,6 m) desde la raíz principal. Las raíces sublaterales eran abundantes y, en general, el suelo hasta 5 pies (1,5 m) de profundidad debajo del trébol blanco estaba "bien lleno de raíces" [275].

DESARROLLO TEMPORAL:
El trébol dulce florece de abril a octubre en toda América del Norte [11,52,82,117,158,191,235,241,292]. Generalmente, el trébol dulce amarillo florece de 1 a 3 semanas antes que el trébol dulce blanco [39,55,220,229,254,267,289]. La tasa de floración en los racimos individuales de trébol dulce blanco suele ser aproximadamente dos veces más rápida que la del trébol amarillo [251], lo que puede explicar por qué Willard [289] sugiere que la floración del trébol amarillo es más uniforme que la del trébol blanco. Las condiciones de humedad, la elevación y probablemente otros factores del sitio pueden afectar la floración. Después de una primavera seca y un junio especialmente seco en Ohio, el trébol dulce floreció por segunda vez a mediados o finales de julio. Hubo varias lluvias moderadas en julio [289]. En los bosques de pino ponderosa en el centro-norte de Arizona, el período de floración del trébol amarillo fue mucho más corto en un sitio que estaba a 600 pies (180 m) más alto que su sitio de comparación [31].

En algunos lugares se describieron el reverdecimiento, el desarrollo de la fruta y la maduración de la semilla del trébol dulce. En el centro-norte de Arizona, el crecimiento vegetativo del trébol amarillo comenzó a mediados de abril. El crecimiento vegetativo se retrasó de 2 a 3 semanas en un sitio de alta elevación en comparación con un sitio de baja elevación. Los frutos maduros de trébol amarillo estaban presentes a finales de agosto en el sitio de baja elevación, y la maduración de los frutos continuó hasta noviembre en el sitio de alta elevación [31]. En el sur de Ontario, generalmente había semillas maduras de trébol amarillo a fines de julio, pero fue a principios de agosto cuando aparecieron las semillas maduras de trébol blanco. A menudo, las semillas de trébol dulce permanecían en la planta durante el invierno (datos no publicados de Rempel citados en [251]).

Brotes de la corona de la raíz y almacenamiento de carbohidratos: A fines del verano y principios del otoño, las plantas de trébol dulce de primer año aumentan el tamaño de la raíz principal, el número y el tamaño de las yemas de la corona de la raíz y el almacenamiento subterráneo de carbohidratos. En los campos cerca de Ames, Iowa, los tallos representan el 90% o más del peso total del trébol dulce blanco de 2 a 3 meses. A finales de septiembre de la 1ª temporada de crecimiento, las raíces proporcionan hasta el 80% del peso total de la planta [157]. En los campos de Wisconsin, los mayores aumentos en el tamaño de las raíces y el almacenamiento de carbohidratos para el trébol dulce de primer año se produjeron entre el 18 de septiembre y el 18 de octubre [216]. Estudios de campo adicionales realizados en Ames, Iowa, mostraron que el peso de la raíz principal del trébol dulce del primer año y la abundancia de yemas de la corona de la raíz aumentaron desde finales del verano hasta principios del otoño. Cuando se excavaron plantas de trébol amarillo de 1er año particularmente "vigorosas" el 20 de agosto, las raíces pivotantes promediaron 2,6 g, y hubo 2,2 brotes de corona de raíces / planta. El peso de la raíz principal promedió 11,7 gy hubo 29,4 cogollos por planta el 20 de noviembre. Los experimentos de invernadero revelaron que los aumentos en el tamaño de la raíz primaria y la producción de yemas de la corona de la raíz ocurrieron con la disminución del fotoperíodo [118]. En campos experimentales en Columbus, Ohio, el trébol dulce produjo grandes brotes de corona de raíces en agosto. Los cogollos se hicieron más grandes y numerosos hasta noviembre [289]. En el Centro de Investigación Agronómica en West Lafayette, Indiana, los investigadores encontraron que el total de carbohidratos de raíces no estructurales (CTN) para el trébol amarillo de primer año fue más alto de noviembre a diciembre. Las ETN alcanzaron su nivel más bajo en mayo después de la aparición de plantas de segundo año [142]. Para obtener más información sobre cómo estos cambios en el desarrollo y el almacenamiento de la raíz pueden afectar la gestión del trébol dulce, consulte Control.

PROCESOS DE REGENERACIÓN:
El trébol dulce se reproduce a partir de semillas. Se han informado casos de brotación vegetativa después de daños, pero son raros (consulte Regeneración vegetativa para obtener más información).

  • Sistema de polinización y reproducción
  • Producción de semillas
  • Dispersion de semillas
  • Banco de semillas
  • Germinación
  • Establecimiento de plántulas y crecimiento de plantas.
  • Regeneración vegetativa
Sistema de polinización y reproducción: Las flores de trébol dulce son perfectas [55,158], y aunque los experimentos han demostrado que las flores autofertilizadas pueden producir semillas, esto rara vez ocurre en condiciones naturales [34], especialmente para el trébol amarillo [122]. La estructura de la flor del trébol dulce fomenta la polinización cruzada por insectos. Cuando los insectos aterrizan en los pétalos inferiores de las flores, el estigma y las anteras se doblan y entran en contacto con el cuerpo del insecto [10]. Las abejas son los polinizadores más comunes del trébol dulce. Se informó que las abejas melíferas, los abejorros y las abejas cortadoras de hojas son importantes polinizadores ([144,285], revisión de [55]). La polinización exitosa por insectos puede verse afectada por la estación y el clima. El clima húmedo y nublado disminuye la actividad de las abejas [10,285], y Bare [10] informa que la capacidad de producción de miel del trébol dulce es mayor a principios del verano que a fines del verano y mayor en las áreas al oeste del río Mississippi que en las áreas al este del río.

Fertilización: después de revisar estudios publicados y realizar estudios originales sobre muchas cepas y variedades de trébol amarillo y blanco, Kirk y Stevenson [122] concluyeron que la autofecundación ocurre naturalmente para algunas cepas o variedades de trébol blanco, pero la producción de semillas a partir de amarillo autofertilizado de forma natural trébol dulce es raro. Los estudios que siguieron a la revisión de Kirk y Stevenson (publicada en 1931) generalmente apoyan sus conclusiones. En el invernadero, los investigadores utilizaron marcadores genéticos para determinar que la fertilización cruzada en las poblaciones de trébol blanco anual y bianual promedió el 67% y el 58%, respectivamente [79]. Cuando las flores amarillas de trébol dulce se autopolinizaron artificialmente, el cuajado de frutos varió de 0 a 69,2% y promedió 19,3% [206]. En un experimento de campo a lo largo del Río Grande en Albuquerque, Nuevo México, la producción de frutos fue baja cuando los racimos de trébol amarillo se protegieron de los insectos visitantes. El cuajado de frutos por racimos protegidos (6%) fue significativamente (PAG Producción de semillas: Se informa de altos niveles de producción de semillas de trébol dulce ([228], Rempel y Cavers datos no publicados citados en [251]), y los informes disponibles indican que el trébol dulce blanco generalmente produce más semillas que el trébol amarillo (Rempel y Cavers datos no publicados citados en [251 ]). Sin embargo, las estimaciones de producción de semillas que utilizan cálculos que asumen que todas las flores producen frutos y todas las frutas producen 1 semilla pueden sobrestimar en gran medida la producción [126]. No se informaron los métodos utilizados para determinar la producción de semillas en los siguientes estudios. En London, Ontario, el gran trébol blanco que crece en condiciones abiertas produce entre 200.000 y 350.000 semillas por planta. Large yellow sweetclover growing under similar conditions rarely produced more than 100,000 seeds/plant (Rempel and Cavers unpublished data cited in [251]). In North Dakota, an average-sized white sweetclover with 5 stems produced 14,235 seeds [228].

Klemow [126] found that estimates of seed production were exaggerated when estimation calculations did not factor in flower abortion and empty fruits. In a white sweetclover population ecology study in an abandoned rock quarry in Syracuse, New York, Klemow [126,127] estimated that white sweetclover produced an average of 4,380 fruits/plant and 11,640 fruits/plant in sparsely vegetated (cover 8%) and densely vegetated (cover 41%) sites, respectively. About 80% of fruits contained a seed, so the average seed production per plant was 3,530 on the sparse site and 9,710 on the dense site. Fruit and seed production estimates, however, assumed that all flower buds counted in August would develop into flowers, form fruits, and produce seed. A later visit to these sites showed that flower buds were often aborted or failed to produce fruit. When abortion and empty fruits were factored into calculations, the most and least seed produced by white sweetclover over the 5-year study period was 5,000 and 171 seeds/plant, respectively [126,127].

Sweetclover seed production is often reduced if plants are damaged, grow on infertile sites, or if insect visitation is limited by weather, insectivorous birds, or other means. In Ontario, Canada, researchers observed that damaged sweetclover plants or plants in extremely infertile soils sometimes produced less than 100 seeds (Rempel and Cavers unpublished data cited in [251]). After many field observations and studies, Coe and Martin [34] found that seed production was greater in dense than in sparse sweetclover stands, reduced in drought conditions, and lower when cloudy, rainy weather limited insect visitation. In Arlington, Virginia, a 3-foot (0.9 m)-tall sweetclover produced 196 racemes, and racemes produced an average of 20.4 fruits each. This plant grew in a stand density of 4 sweetclover/ft². When plants were protected from insects, racemes averaged 0.63 fruits each [34]. Along the Rio Grande in Albuquerque, New Mexico, yellow sweetclover fruit set increased with increasing distance from cliff swallow colonies. When plants were within 660 feet (200 m) of the colonies, fruit set was reduced by about half. Once cliff swallow chicks fledged, however, the relationship between fruit set and colony proximity was lost. Cliff swallows were consuming insects that visited yellow sweetclover. Researchers estimated that a cliff swallow colony of 150 nests could consume over 500,000 insects per day, based on an average insect size of 5 mm [163].

Seed dispersal: Because sweetclover lacks appendages for wind dispersal, most seed falls near the parent plant (review by [49]), but observations and experiments indicate that long-distance dispersal by animals and water is possible. Long-distance dispersal may also occur through the transport of contaminated seed or animal feed ([14], review by [49]).

Water: Several sources suggest that sweetclover seed is dispersed by water. Based on plant distributions along waterways in Alaska [37,225], Montana [14], Arizona [237], and New Jersey [221], sweetclover seed dispersal by water seems likely. Experiments conducted in London, Ontario, showed that over 65% of white sweetclover seeds were still floating after 15 minutes in violently agitated water (unpublished experiments described in [251]).

Animal: Observations and experiments leave little doubt that sweetclover seed is transported by animals. In the Intermountain West, sweetclover spread along cattle trails was reported [11], and in the Missouri Ozarks, sweetclover was restricted to horse trails [236]. While collecting sweetclover seeds for later experiments, students found that sweetclover seeds with fruit layers attached were transported on human clothing (unpublished experiments described in [251]).

Experiments show that viable sweetclover seed can be recovered from animal feces. When white-tailed deer pellets were collected from mixed-deciduous forests in Ithaca, New York, a maximum of 13 white sweetclover seeds germinated/pellet group [171]. Three white sweetclover seeds were collected from crops of mourning doves, and 1 seed germinated. A seed recovered from the gizzard did not germinate [8]. When calves, horses, sheep, hogs, and chickens were fed a known quantity of white sweetclover seed, 17.7%, 10%, 17.1%, 11%, and 0% of the seed germinated from collected feces, respectively. When recovered seeds were treated with sulfuric acid, germination rates increased by 40% or more, indicating that a large portion of white sweetclover seeds were still hard after passing through these animals (see Germination for more about hard sweetclover seed). Five percent of white sweetclover seeds that remained inside calves for up to 48 hours germinated. Ten percent of seeds recovered after 48 to 80 hours inside calves germinated. Sweetclover seeds may also be transported in partially composted manure. Two percent of white sweetclover seeds germinated after 2 months of burial in manure [92].

Although wind dispersal is relatively unimportant for sweetclover, a study found that the weight of white sweetclover seeds depended on time of production. Fifty seeds produced early in the growing season and late in the growing season averaged 78.9 mg and 59.3 mg, respectively [28]. Whether or not lighter seeds could be dispersed longer distances is unknown, and germination percentages were not reported.

Seed banking: Studies clearly indicate that sweetclover produces a seed bank however, estimates of the longevity of seed in the soil vary from >2.5 [126,260] to 81 years (review by [204]). Sweetclover seeds have germinated after 81 years of storage (Becquerel 1934 cited in [41]), but field studies involving the recovery and germination of buried seed over time are lacking.

Sweetclover produces a percentage of hard seeds (see Germination) that germinate only after scarification. Hard seeds likely make up the majority of the seed bank [115,233]. When white sweetclover seed was buried in pots on an abandoned rock quarry near Syracuse, New York, 43% and 26% of the seed on sparsely and densely vegetated sites, respectively, failed to germinate but was still viable a year later [126]. In other studies, sweetclover emerged from soil samples although plants were absent from the aboveground community [29,198].

Storage conditions: Sweetclover seeds have survived and germinated after decades in storage, but storage conditions were rarely described, making it difficult to assess their relevance to field situations (Becquerel 1934 cited in [41], Ewart 1908 cited in [274], Munn 1954 cited in [219], Crocker 1938 cited in [251]). Thirty percent of white sweetclover seeds germinated after 19 years in an unheated shed in Twin Falls, Idaho. Maximum and minimum temperatures for Twin Falls can be 105 °F (41 °C) and -26 °F (-32 °C), and in the shed, temperatures were slightly higher [106]. After 81 years of storage in unknown conditions, 0.6% of white sweetclover seed was viable (Crocker 1938 cited in [251]).

Field conditions: Field studies suggest that sweetclover seed remains viable after 14 to 17 years in the soil but may survive over 50 years in the soil. Several researchers indicate that sweetclover can be abundant even after "several years" without mature plants on a site ([115], review by [187]). After 5 years of underwater storage in Prosser, Washington, a small proportion of white sweetclover seed germinated, but 42% of seeds were still firm [36]. In North Dakota, sweetclover remained viable in the soil for at least 14 years. Sweetclover was planted and allowed to produce seed on 2 agricultural plots. In the following years, plots were cultivated and planted to other crops. Sweetclover seedlings emerged almost every spring for 14 years, even though 1st-year plants were killed each year [233]. On experimental plots at the University of Saskatchewan, white sweetclover seed survived 17 years in the soil. Crop history records and the distribution and quantity of seed led the researcher to conclude that white sweetclover germinated from soil-stored seed, not dispersed seed [13]. In another field study, a researcher visited several areas where circumstances would indicate long-lived, soil-stored seed. In Copenhagen, Denmark, a pork market that was built in 1910 was torn down in 1961. Some archaeological digging occurred, and by 1963, yellow sweetclover was growing on site. Because wind-dispersal is unlikely, the researcher speculated that yellow sweetclover germinated from soil-stored seed [176].

Germination: Sweetclover generally produces both readily germinable and water-impermeable or "hard" seeds. Percentages of hard seed produced vary. Of the sweetclover seeds collected from the Royal Botanic Gardens in Cambridge, England, 32% of yellow sweetclover and 85% of white sweetclover seeds were hard [274]. Over 90% of white sweetclover seeds collected in July and August from roads and grasslands near Leuven, Belgium, were hard [260]. The seed collected from sweetclover that had germinated from seed stored in the soil for up to 14 years in North Dakota was nearly 100% hard [233]. Factors controlling the proportion of hard seed produced were not described in the available literature (2010).

Germination of hard sweetclover seeds can be encouraged by heat treatments and fluctuating temperatures around freezing. Light is not required for sweetclover germination, and high temperatures (95 °F (35 °C)) discourage germination [248]. One study found that germination of white sweetclover seeds was significantly lower (PAG=0.0069) in the field (6.7%) than in the laboratory (11.8%) [181], suggesting that germination results from greenhouse studies may not be fully realized in field conditions.

Heat: Researchers report that fire can stimulate germination of soil-stored sweetclover seed ([35,128], review by [45]). In the laboratory, heat treatments have increased the germination of hard sweetclover seed. After soaking hard white sweetclover seeds in 180 °F (80 °C) water, most became permeable to water (Martin 1922 cited in [190]). Dry heat treatments of 150 °F (66 °C) for 5 days produced a maximum germination increase of 10% for hard sweetclover seed. One minute at 220 °F (100 °C) produced only a 2.5% increase in hard seed germination, but 4 minutes at 220 °F (100 °) significantly (PAG Chilling: Alternating temperatures that include near freezing temperatures may increase germination of hard sweetclover seed more than constant freezing or chilling temperatures [155,260]. After conducting several experiments, Martin [155] found that moisture content did not affect softening or germination of hard seed but that 2 or more months of alternating temperatures around freezing produced high germination percentages. Seeds buried outdoors from October to late April at 1 to 3 inches (2.5-7.5 cm) deep germinated better than seeds buried deeper, where minmum temperatures and temperature fluctuations were reduced [155]. After conducting field and laboratory experiments on white sweetclover seed collected in Leuven, Belgium, researchers concluded that chilling and exposure to alternating temperatures increased germination [260]. Fluctuating cold temperatures may not be sufficient for germination of all hard sweetclover seed, however. In experimental field plots at the University of Saskatchewan, nearly all white sweetclover seeds required scarification to germinate even after 17 years in the soil [13].

Other vegetation: Presence of other vegetation may affect sweetclover germination. In northern Arizona, yellow sweetclover formed dense stands on sites lacking bunchgrass cover, but as bunchgrasses increased yellow sweetclover decreased. Experiments revealed that live foliage extracts from Arizona fescue (Festuca arizonica) and mountain muhly (Muhlenbergia montana) significantly reduced the germination percentage, germination rate, and initial root development of yellow sweetclover (PAG Seedling establishment and plant growth: Sweetclover seedling establishment and growth are generally best in moist and moderated conditions. Several studies indicate that sweetclover utilizes other vegetation as nurse plants for successful establishment. Yellow sweetclover seedlings are considered more "vigorous" than white sweetclover seedlings (review by [220]), but reasons for this claim were not provided.

Emergence timing: Although sweetclover seedlings can emerge throughout the growing season, emergence peaks in the spring ([126,127], review by [251]). In southern Ontario, sweetclover seedlings emerge throughout the year, but emergence is greatest in March and April. Another smaller peak in emergence occurs in September or October. With 3 or more days above freezing, winter emergence can occur. Survival rates are best for seedlings emerging from late March to early May. Early emergence can compress the sweetclover life cycle into one year: Sweetclover seedlings that emerged in February or March on the gravel bars of the Thames River typically flowered in their first year (review by [251]).

Burial and moisture: Moisture is important for initial sweetclover establishment (125,124, review by [251]), and planting guides suggest seeding sweetclover 0.5 inch (1.3 cm) deep in "heavy soils with good moisture", and 1 inch (2.5 cm) or deeper in "light soils" or low-moisture conditions (review by [219]). Experiments conducted on white sweetclover seed collected from China's Qubqi Desert also indicate that deeper burial may improve survival of seedlings in low-moisture conditions. Generally, establishment in sand was better from seeds buried more deeply (1.2 inches (30 mm) under a low-moisture regime and more shallowly 0.2 inch (5 mm) under a high-moisture regime. Seeds buried 2 inches (5 cm) deep generally failed to establish. Because light is not required for germination, researchers speculated that anoxic conditions at this depth may explain poor establishment. In a companion experiment, researchers found that white sweetclover seeds submerged for 6 days produced radicles that were deformed or missing growing tips [248].

Site conditions: Observations indicate that sweetclover seedling density, arrangement, and survival vary with site conditions. High seedling densities are common in riparian areas. Along the Nenana River floodplain in Alaska, white sweetclover seedling density ranged from 407 to 1,307 seedlings/2 m² plot. Within the plots, seedlings were highly clumped. There were often more than 60 white sweetclover seedlings/400 cm² [225]. Following winter flooding on the dry surface zone of the Hassayampa River in central Arizona, sweetclover seedling establishment was high. Establishment timing and high sweetclover seedling cover prevented establishment of saltcedar (Tamarix spp.) in the area [237].

In Ontario, sweetclover seedling density and survival varied by soil type. On fertile clay or loam soils, sweetclover seedlings were typically clumped and the majority did not survive. In the greenhouse, more than 75% of sweetclover seedlings died within 5 months when they occurred at a density of 600 seedlings/m². On gravelly, sandy, or stony soils, sweetclover seedling mortality was high fewer than 5% of seedlings survived more than 4 months. On steep eroded banks and frequently disturbed sites, sweetclover seedling emergence was low but subsequent mortality was also low, so that these inhospitable sites generally supported a few large plants that typically produced abundant flowers (review by [251]).

Disturbances and neighboring vegetation: Sweetclover is often associated with disturbed, open sites, but some studies show that sweetclover establishment may be improved when other vegetation is present. Sweetclover seedling survival increased with gap size in a Kentucky bluegrass (Poa pratensis)-dominated old field in southwestern Michigan. Although sweetclover germination was high in the 0.5, 1, 2, and 3 cm diameter gaps cut into the sod, early seedling survival was significantly lower in small gaps than in large gaps (PAG ≤ 0.01). The study area burned several weeks before this field experiment, so light levels were high in all intact plots. Researchers suggested that species removal may have lead to the loss of safe sites and made conditions too harsh for successful establishment [218]. In an abandoned rock quarry in Syracuse, New York, there were up to 15.5 white sweetclover seedlings/0.25 m² on a sparsely vegetated site and 116 white sweetclover seedlings/0.25 m² on a densely vegetated site. Water-holding capacity was greater on the dense than the sparse site. In a year that was very warm and dry during the initial seedling establishment stage, the presence of vegetation seemed to improve survival of white sweetclover seedlings. However, when 5 years of data were pooled, survival of white sweetclover was not significantly different between densely and sparsely vegetated sites. Establishment and survival of white sweetclover on these sites in a normal and a dry year are shown in the table below [126,127].

SITE CHARACTERISTICS:
Throughout its nonnative range, sweetclover is described on open, disturbed sites that include roadsides, railways, fields, and waterways [10,37,48,98,151,188].

Clima: The wide distribution of sweetclover implies wide climatic tolerance. Moisture is important for sweetclover seedling establishment, but once established, plants tolerate extremely dry conditions. In the fall, contractile roots pull sweetclover root crowns beneath the soil surface ( ≥ 2 inches (5 cm)), protecting plants from freezing temperatures (review by [251]). Yellow sweetclover is considered more heat and drought tolerant than white sweetclover (reviews by [220,254]). Although yellow sweetclover has also been described as more cold hardy than white sweetclover (review by [254]), current distributions suggest this may not be true (see General Distribution). In Alaska, sweetclover occupies habitats with extreme weather. In Ketchikan, annual precipitation averages 160 inches (3,940 mm) and temperatures average 45 °F (7.2 °C). In interior Alaska, annual precipitation can be as low as 6 inches (170 mm), and the average annual temperature can be as low as 26 °F (-3.3 °C) [37]. During growth chamber experiments, researchers found that 1- to 4-week-old yellow sweetclover seedling survival was high at 21 °F (-6 °C). Survival was much lower at 18 °F (-8 °C) [165].

Elevation: Range of elevations reported for sweetclover in western North America
Area Elevation
Arizona
(Grand Canyon)
1,600 to 8,500 feet (488-2,591 m) yellow sweetclover occurs about 330 feet (100 m) above and below white sweetclover [227]
California Below 4,920 feet (1,500 m) [98]
Colorado Yellow sweetclover: 4,000 to 7,500 feet (1,220-2,290 m) white sweetclover: 4,500 to 7,500 feet (1,370-2,290 m) [93]
Hawai White sweetclover: 15 to 4,400 feet (5-1,340 m) [268]
Nevada Yellow sweetclover: 2,300 to 6,300 feet (700-1,900 m) white sweetclover 1,200 to 6,500 feet (370-1,980 m) [117]
New Mexico 4,000 to 8,000 feet (1,200-2,400 m) [158]
Utah Yellow sweetclover 4,000 to 8,010 feet (1,220-2,440 m) white sweetclover 3,490 to 7,000 feet (1,065-2,135 m) [282]
British Columbia (southeast) Good growth from 5,910 to 7,320 feet (1,800-2,230 m) poor growth above 7,970 feet (2,430 m) [233]

Suelos: Sweetclover grows on a variety of alkaline or slightly acidic soils ([33,37], review by [220]). Very low nutrient levels and fine- and coarse-textured soils are tolerated ([37,167,245,279], review by [233]). Several reviews indicate that yellow sweetclover tolerates nutrient-poor and dry soils better than white sweetclover [49,89,219,254].

Sweetclover occupies a variety of soil types and textures but growth and productivity can vary by soil type and region. Residents of Fort Smith near Canada's Wood Buffalo National Park reported that sweetclover expanded its range on fine-textured soils but nevertheless was primarily restricted to disturbed sites [279]. In meadows in Michigan's Oakland County, white sweetclover was "plentiful" on sites with "considerable clay" [245]. In southwestern North Dakota, yellow sweetclover occupied a variety of habitats with textural classes ranging from loams to clays and pH ranging from 7.9 to 8.8 [73]. A review reports that sweetclover is most productive on silt loams to clay loams with neutral to alkaline pH [89]. Wasser [273] reports a minimum pH tolerance of 5.5 for yellow sweetclover. Seeding of yellow sweetclover was successful on a South Dakota rangeland where soils were up to 65% clay [172]. On riverbanks in Quebec, white sweetclover was most common on alkaline, sandy soils with very rapid drainage and low to high degrees of stoniness [167]. On Alaska rivers and roads, white sweetclover density was lower on cobbly than on sandy surfaces [37].

Many studies report an association between white sweetclover and calcareous soils. White sweetclover was especially common on calcareous soils in Michigan [267], the northeastern United States and southeastern Canada [75], the Gulf and Atlantic Coasts [52], and eastern Texas [272]. During a study conducted in Canada, researchers found that white sweetclover plants grown from seeds collected on calcareous soils grew well only on calcareous soils. White sweetclover plants grown from seed collected on acidic soils grew well on acidic and calcareous soils but grew best on calcareous soils [192].

Salinity: Sweetclover tolerates moderate salinity [119,257]. A review reports that salinity levels of 0.2 to 0.4% or 2 to 4 ppt (3-5 mS/cm) are tolerated (review by [233]). In Alberta, Saskatchewan, and Manitoba, white sweetclover occurred on soils where salt crystals were visible on the surface [17,50]. Yellow sweetclover was reported in a marsh near Lincoln, Nebraska, where the salinity averaged 0.2% [257] white sweetclover grew along the South River in Anne Arundel County, Maryland, where salinity levels ranged from 0.2 to 3.6% [185].

Moisture and flooding: Sweetclover is common in riparian areas and typically tolerates short-duration flooding early in the growing season [11,238]. A review indicates that white sweetclover is slightly more flood tolerant than yellow sweetclover. In southern Ontario, white sweetclover is occasional along rivers with several weeks of winter and spring flooding (review by [251]). Along Alaska's Nenana River, white sweetclover survived shallow flooding that lasted only a few days [37]. In southern Idaho, Rosentreter [202] reported that yellow and white sweetclover abundance increased in periodically flooded stream banks, but yellow sweetclover is typically killed by high water during the growing season (review by [89]). During field experiments in London, Ontario, fewer than 10% of sweetclover plants survived 5 days of immersion in the Thames River when the temperature was 68 °F (20 °C) (Weekes and Cavers unpublished data cited in [251]).

SUCCESSIONAL STATUS:
Generally sweetclover is an early to mid-seral species common on open, disturbed sites. Sweetclover rarely persists in dense shade and often appears early in the succession of recently disturbed or bare sites. It is important to note that year-to-year sweetclover cover can vary a lot "boom" growth years are common [262]. In South Dakota, times when areas are covered with white and/or yellow sweetclover flowers are described as "sweetclover years" [115]. In big sagebrush/grasslands in central Montana, researchers reported 10% to 12% cover of yellow sweetclover in one year and less than 1% cover the next [270]. Large fluctuations in sweetclover cover make interpretation of seral change along a chronosequence difficult.

Shade: Most reviews and studies indicate that sweetclover grows best in full sun or partial shade. A review of Upper Midwest habitats indicates that sweetclover is most frequent in open, disturbed upland prairies, savannas, and dunes (review by [45]). Other reviews report that sweetclover is less "vigorous" and produces fewer seeds in shade than in full sun [251] however, shade tolerance may be greater in hot, dry climates [222].

Most studies and observations indicate that although sweetclover is common on open sites, some degree of shade tolerance also exists. At the Mammoth campground in Yellowstone National Park, yellow sweetclover was positively associated with open canopy conditions (P Bare site succession: Bare soil is rapidly colonized by sweetclover, but rarely does sweetclover persist as a dominant. On calcareous soils deposited during construction in central Germany, white sweetclover dominated (60-75% cover) in the 2nd and 4th years of succession. White sweetclover populations collapsed in the 5th year, but in the 7th and 10th years of succession, white sweetclover cover exceeded 10% [208]. In Plzen, Czech Republic, white sweetclover dominated a nutrient-poor site 6 years after bare soil was left by a human-caused disturbance. White sweetclover did not dominate in any other year [189]. Yellow sweetclover production was greatest 4 years after disturbance in a sagebrush habitat in northwestern Colorado. After all vegetation and the top 2 inches (5 cm) of soil were removed and the remaining 14 inches (35 cm) of soil was mixed, yellow sweetclover production was 1 g/m² in first postdisturbance year, 13 g/m² in the 2nd, 5 g/m² in the 3rd, 32 g/m² in the 4th, and less than 1 g/m² in the 5th, 6th, and 7th years [161]. Near Duluth, Minnesota, yellow sweetclover appeared 4 years after bare sand was deposited in a high-water year. Persistence beyond this time was not reported [136]. On fly-ash mine pits in Tennessee, the importance of white sweetclover was greatest on 8-year-old pits when 6-month, 3-year, and 8-year-old pits were compared. Fly ash that is deposited into the pits is "essentially sterile", free of seeds and other reproductive plant material [76]. Sweetclover occurred in the early succession of sand flats in eastern New York created by deposition of material dredged from the Hudson Estuary channel. Dredging began in 1929, and species composition was first evaluated in 1935 [162]. In vacant lots in Montreal, Quebec, white sweetclover-dominated sites had a large amount (10.8-26.5%) of bare ground [265].

Floodplain succession: On floodplains, sweetclover is common in early- and mid-seral stages of succession. In southwestern North Dakota, yellow sweetclover occurs in early-seral eastern cottonwood-Rocky Mountain juniper (P. deltoides-Juniperus scopulorum) stands, and mid-seral eastern cottonwood-green ash (Fraxinus pennsylvanica) stands on more stable floodplains [73]. In eastern cottonwood stands along the Missouri River in southeastern South Dakota, white sweetclover cover generally decreased with increasing eastern cottonwood stand age. In stands estimated to be 10, 14, 23, 35, and 55 years old, yellow sweetclover cover averaged 8%, 12%, 2%, 2%, and 0%, respectively [291].

Old field succession: Abandoned agricultural fields are common sweetclover habitat. Typically sweetclover abundance is lowest in the most successionally advanced old fields. Likely the composition and density of associated vegetation affects sweetclover persistence. In the Black Forest of central Colorado, yellow sweetclover occurred on a 4-year-old field but not on 1-, 9-, or 22-year-old fields [145]. When a previously cultivated site at the Fermi National Accelerator Laboratory in Illinois was seeded with native tallgrass prairie species, white sweetclover frequency was greater after 1 to 6 years after seeding than 12 years after seeding [215]. At the WW Kellogg Biological Station in Kalamazoo County, Michigan, large white sweetclover patches occurred in fields last plowed 10 to 16 years previously [284]. When different-aged stands were sampled along a chronosequence of old field to deciduous forest in southwestern Ohio, sweetclover was present but not common on 2-, 10-, and 50-year-old fields. Sweetclover did not occur in stands 90 or 200 years old. Two-year-old fields were dominated by red clover (Trifolium pratense) 10-year-old stands were dominated by Canada goldenrod (Solidago canadensis) and meadow fescue (Schedonorus pratensis) 50-year-old stands were dominated by Canada goldenrod and had 30% cover of white ash (F. americana) and black cherry (Prunus serotina). Stands 90 years and older were dominated by deciduous forest species [264].

Disturbances: Throughout its nonnative range, sweetclover is described on disturbed sites [10,89,201,267,282,298]. Generally sweetclover occurs on recently disturbed sites, but without further disturbance, sweetclover fades from the community. In mixed- and shortgrass prairie near Cheyenne, Wyoming, yellow sweetclover occurred and was sometimes frequent on sites disturbed about 3 to 25 years earlier. On undisturbed sites or sites disturbed more than 25 years ago, yellow sweetclover was rare or absent [205].

In prairies, sweetclover often occurs on soil mounds created by wildlife. In the prairie potholes of Montana, North Dakota, South Dakota, and western Minnesota, sweetclover occurred on earth mounds created by pocket gophers and badgers [99]. In Billings, North Dakota, yellow sweetclover occurred in all 4 active prairie dog towns visited [234]. On Cayler Prairie Preserve in Dickinson County, Iowa, sweetclover was consistently associated with excavation mounds created by badgers that were hunting ground squirrels. Sweetclover was uncommon in undisturbed tallgrass prairie [186]. In Wisconsin prairies, soil mounds created by ants or other animals are the first establishment site for white sweetclover [43].

Roads and waterways are common sweetclover habitats and have been important to sweetclover spread (see Introduction and spread). In Alaska, sweetclover was restricted to roadsides and floodplains and did not occur in roadless areas [37]. In the Northern Rocky Mountains, yellow sweetclover occurred in disturbed areas (roads, ditch banks, or logged sites) above and below timberline but did not occur in little-disturbed or undisturbed vegetation [276]. In mixed-grass prairie and open ponderosa pine woodlands in Wind Cave National Park, South Dakota, logistical regression analyses revealed that sweetclover was associated with roads and trails. Yellow sweetclover was also common in prairie dog towns, and white sweetclover was most common on low-elevation, recently burned sites [177]. In the wet to mesic Chiwaukee tallgrass prairie in Wisconsin, density of white sweetclover was significantly greater on past disturbed than undisturbed transects [164]. In the late 1990s, researchers surveyed 1,940 miles (3,120 km) of county and state roads in western Adirondack Park, New York. White sweetclover occurred at more than 100 sites in the survey area [20].

Grazing: In the studies that evaluated sweetclover on grazed and ungrazed sites, typically cover on grazed sites was similar to or greater than cover on ungrazed sites. Yellow sweetclover persisted on grazed and ungrazed sites during drought conditions in semiarid grassland in north-central Arizona. Moderate- and high-impact, short-duration grazing rotations were evaluated. During the 8-year study, precipitation levels for the 8 months prior to July were 2.5 to 12 inches (62.4-312.8 mm) lower than the 20-year average [146]. In western Colorado, yellow sweetclover cover within long-term (41-51 years) ungulate exclosures in sagebrush and mountain shrubland did not differ much from cover outside the exclosures [153]. When grazed and ungrazed portions of Fults Prairie, Illinois, were compared, yellow sweetclover was absent from the ungrazed portion and had 36% frequency on the grazed portion. Researchers suggested that decreased abundance of climax vegetation on grazed sites increased the success of yellow sweetclover and other “weedy” species [174]. While aboveground cover of yellow sweetclover may not differ on grazed and ungrazed sites, seed density differed in soils collected from grazed and ungrazed mixed-grass prairie sites in western North Dakota. Fewer than 5 yellow sweetclover seedlings emerged from soil samples taken from grazed sites, and more than 20 seedlings emerged from soil samples from ungrazed sites [111].

For information about sweetclover and fire-disturbed sites, see the discussion on Long-term fire effects and postfire succession.


Dosing

Bakhshayeshi S, Madani SP, Hemmatabadi M, et al. Effects of Semelil (ANGIPARS) on diabetic peripheral neuropathy: a randomized, double-blind placebo-controlled clinical trial. Daru: Journal of Faculty of Pharmacy, Tehran University of Medical Sciences. 201119(1):65.

Cornara L, Xiao J, Burlando B. Therapeutic potential of temperate forage legumes: a review. Crit Rev Food Sci Nutr 201656 Suppl 1:S149-61. View abstract.

Hogan RP III. Hemorrhagic diathesis caused by drinking an herbal tea. JAMA 1983249:2679-80.

Tamura S, Warabi Y, Matsubara S. Severe liver dysfunction possibly caused by the combination of interferon beta-1b therapy and melilot (sweet clover) supplement. J Clin Pharm Ther 201237(6):724-5. View abstract.

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